丙型肝炎病毒检测方法的研究进展及其临床意义 吴晓东, 中国科学院研究生院 北京市 100039 首都医学发展科研基金资助项目, No. 2002-3068 首都医科大学基础临床合作基金资助项目, No. 02JL20 通讯作者:谢立, 100054, 北京市, 首都医科大学附属北京佑安医院, 中国科学院研究生院. [email protected] 电话: 010-63292211-2276 收稿日期: 2005-01-29 接受日期: 2005-03-03
摘要
丙型肝炎病毒(HCV)为嗜肝性慢性病毒.HCV 感染后，患者的起病和临床症状极不典型，以亚临床感染为多见，容易造成漏诊.HCV 感染的慢性化发生率明显高于乙型肝炎，较乙型肝炎易早期出现肝硬化、肝癌，死亡率较高. 因此HCV 的检测对丙型肝炎病毒感染的早期诊断和指导临床治疗有重大的意义. 目前用于HCV 感染诊断的两项主要指标为抗-HCV 和HCV RNA ，现多采用的第三代检测抗-HCV EIA试剂增加了HCV 基因组NS5区表达的蛋白作为抗原，进一步提高了试剂的敏感性，但还存在“窗口期”漏检的问题.HCV RNA检测灵敏度高、特异性强，具有早期诊断的意义，但检出率较低，检测复杂，也可出现假阳性. 作为抗-HCV 检验的补充试验，HCV 核心抗原的检测对处于HCV 感染“窗口期”的个体检测有很大价值.
谢立, 吴晓东. 丙型肝炎病毒检测方法的研究进展及其临床意义. 世界华人消化杂志 2005;13(7):884-886 0 引言 丙型肝炎病毒是单股正链RNA 病毒.1991年，国际病毒命名委员会(ICTV)将其归为黄病毒科丙型肝炎病毒属[1]，其基因组含有一个大约9033个核苷酸构成的大开放读码框(ORF)，可编码3010-3033个氨基酸的多蛋白前体，多蛋白N 端的1/4依次为核心蛋白(C)和包膜蛋白(E1和E2) 等结构蛋白，其余依次为NS2、NS3、NS4和NS5等非结构蛋白[2]，膜蛋白分布于病毒表面，NS3蛋白具有蛋白酶的功能，NS5蛋白为一依赖于RNA 的RNA 多聚酶. 与其他RNA 病毒一样，HCV 基因组有很大的变异性，可能会引起其分子生物学行为、感染性、临床致病性及对药物治疗的反应等诸方面的不同[3-4]. 现已证实，90%非肠道传播的非甲非乙型肝炎(NANBH)为HCV 感染所致[1]，35-50%的非甲非乙型肝炎发展为慢性肝炎，与肝癌的发生相关[2]. 自从1978年Shirachi et al首先报道用双向免疫扩散法在输血后肝炎患者急性期和恢复期血清中找到了丙型肝炎病毒特异性的抗原和抗体，而后不少学者利用放射免疫(RIA)和酶联免疫(ELISA)等方法都曾找到了特异性的丙型肝
炎病毒抗原和抗体[5-6].1989年，Choo et al从大量有高度传染性的黑猩猩血浆中提取核酸，经逆转录和分子克隆并进行筛选，获得了部分HCVcDNA 序列，并表达重组抗原，建立了特异性抗-HCV 血清学的检测方法[7-8]，使丙型肝炎的研究成为近年来非常活跃的研究领域，并取得了重大进展. 我们就HCV 血清学检测方法的研究进展进行了综述.
1 丙型肝炎病毒抗-HCV 的检测
随着血液制品在世界范围的流通，HCV 感染呈世界性分布，为了控制丙型肝炎病毒的血液传播，世界各国均开展了对献血员抗-HCV 的检测. 常用的抗-HCV 诊断试剂采用间接酶联免疫法(ELISA)，其基本原理是以HCV 抗原包被酶标板，用辣根过氧化物酶标记的抗人IgG 与被检血清中的抗-HCV 反应，邻苯二胺(OPD)或3，3’5，5’-四甲基联苯胺(TMB)显色后，根据颜色的深浅进行阴阳性判断. 该方法中包被抗原的组成和质量是关键因素. 第一代抗-HCV ELISA采用的抗原C 100-3是HCV 非结构基因(NS3/NS4)和人超氧化物歧化酶基因嵌合后表达的融合蛋白，灵敏度低，漏检率较高; 第二代抗-HCV ELISA在第一代基础上增加了核心区重组蛋白C 22和NS3区重组蛋白C 33c ，虽然在灵敏度和特异性上有很大改善，但仍不能排除由于重组融合蛋白带来的少数假阳性和极少数的漏检[9]. 目前我国多采用第三代抗-HCV ELISA试剂，其包被抗原为HCV 核心抗原、NS3、NS4和NS5抗原，特异性超过99%，虽然目前缺乏判断其敏感性的金标准，但对于免疫功能正常的HCV RNA阳性感染者，抗-HCV 检出率也高于99%[10].
2 丙型肝炎病毒核酸RNA 的检测
HCV感染后一般到抗体转阳有一个较长的窗口期，平均为70 d，有的患者窗口期可延长至6-9 mo或更长，约1-3%的患者抗-HCV 可持续阴性，而基因组的复制出现得很早，感染后数天即出现病毒血症. 已有输血后即有丙型肝炎病毒感染发生的报道，这表明抗-HCV 阴性的献血员中有少数存在丙型肝炎病毒输血传播的可能性[11]; 另外，美国已报道了1例抗-HCV 阴性的器官捐赠者对接受移植者造成丙型肝炎病毒急性感染[12];Willemset al[13]检测克罗地亚不同地区输血中心的2718份抗-HCV 阴性血浆中2.1%为HCV RNA阳性. 因此直接检测HCV RNA对于筛查窗口期HCV 感染的献血者，降低输血后HCV 感染的发病率是必要的. 外周血中检出HCV RNA是HCV 复制活跃的可靠指标，在感染1-2 wk内血清中可检测到HCV RNA，在感染自然恢复前血清中HCV RNA将达到一个高峰，但HCV RAN在达到峰值或重新出现前数天或数周内偶尔也可能检测不到. 在大多数向慢性转化的感染者中，HCV
RNA 含量降低速度逐渐减慢，最后趋于稳定，晚期肝病患者的HCV RNA水平很低，甚至无法测出[14].
HCV RNA检测包括定性和定量两种方法，其基本原理就是逆转录聚合酶链反应(RT-PCR):首先经逆转录酶作用，在特异性引物存在下，将HCV RNA逆转录为单链的cDNA ，再通过PCR 将cDNA 扩增. 定性PCR 的灵敏度高于定量PCR ，例如罗氏公司试剂，定性PCR 的灵敏度为50 kIU/L，定量PCR 为600 kIU/L;拜尔公司的定性PCR(转率介导扩增法，TMA) 试剂的灵敏度为10 kIU/L，其定量PCR 为615 kIU/L，因此定性PCR 主要用于急慢性丙型肝炎诊断，而定量PCR 则用于疗效监测[15]. 不同定量分析方法中的检测单位与临床标本的HCV RNA 实际水平的关系不完全一致，世界卫生组织制定了HCV RNA定量分析单位的国际标准(IU)，目前分析方法检测的下限值范围为30-615 kIU/L，上限值范围为5×105-7.7×105 kIU/L，特异性为98-99%，且不受基因型的影响[10].
尽管RT-PCR 检测HCV RNA具有早期、敏感和特异等特点，但该方法在技术和设备上要求较高，且费时，检出率较低，主要原因是:HCV在血液和肝组织中的感染滴度很低，且有一定波动;HCV RNA易被血细胞中的RNA 酶降解，因此如果被检标本保存不当(例如反复冻融) 将影响检测结果;HCV RNA还受进食的影响，易与血中脂质及脂蛋白结合，降低检出率; 另外，RT-PCR 的多步骤实验中任何步骤的问题均易影响其检出. 该方法也容易因污染而出现假阳性. 因此RT-PCR 方法难以在常规工作或基层实验室推广，限制了普遍应用[16]. 为了使HCV RNA的检测规范化，应采取以下相应措施:对患者在空腹条件下抽血，及早分离血清和进行检测，避免对标本反复冻融，PCR 的整个过程应避免RNA 酶及DNA 酶对标本的降解和对模板的污染[17].
3 一种新的HCV 检测方法:血清中HCV 核心抗原的检测丙肝病毒核心蛋白约含190 aa，其氨基酸序列十分保守，比较已有的HCV 各分离株的氨基酸序列，其同源性超过95%，在病毒增殖及发病机制中起重要作用，是HCV 感染的重要标志.
自从1989年建立了丙肝病毒抗-HCV 检测方法以来，一些学者也曾经试图建立血清中HCV 抗原的检测方法，但由于血液中HCV 抗原含量太低，用常规方法无法检出. 近年来由于HCV 单克隆抗体的研制成功，已有国内外学者发表了肝组织及分泌物中HCV 抗原检测成功的报道. 例如:国外已有学者报道应用HCV 基因组C 区、E 区和NS3区表达抗原制备单克隆抗体检测肝组织中HCV 相关抗原获得成功[18];Pasquier et al报道了应用重组HCV 抗原
所获动物抗体测定NANBH 患者精液中HCV 抗原的技术[19]. 国内陈佩兰et al也报道了应用HCV 核心区和NS3区单克隆抗体对患者外周血单个核细胞内HCV 抗原的免疫组化检测[20]. 对于血清中HCV 抗原的检测，1996年Kashiwakuma et al[21]报道了用荧光酶免疫分析法(FEIA)检测血清中的HCV 抗原，该方法对重组核心抗原的检测灵敏度可达20 ng/L，对血清中HCV 核心抗原的检出与HCV RNA呈正相关，在慢性丙肝患者中的检测率为92.3%(70/76);1999年Aoyagi et al[22]建立了一种不需要特殊仪器设备的简单、高灵敏度的酶免分析法用于检测血清中的HCV 核心抗原，在该方法中先用三种去垢剂(TritonX-100，CHAPS 和SDS) 预处理被检标本，即有效灭活标本中的抗核心抗原抗体，检测结果不受血清样品中的抗凝剂或血液因子的影响，125名健康人群和50例乙肝患者的HCV 核心抗原检测均为阴性，而73例抗-HCV 阳性患者中HCV 核心抗原检出率为78.1%(57/73)，与HCV RNA也有很好的相关性(r= 0.8，P
血清中HCV 抗原的检测还有利于HCV 感染患者的早期发现，特别是某些免疫功能紊乱、免疫功能低下的患者和某些不产生抗体的携带者[25].Courouce [26]和Lee et al[27]对血清转换前的患者进行了血清中HCV 抗原的检测，结果表明HCV 抗原的检出比HCV RNA平均晚1-2 d ，而且与HCV RNA的动力学变化密切相关，可以作为HCV 复制的标志[28].
目前美国Ortho 公司已推出了用双抗体夹心法定性或定量检测血清样品中总的或游离的HCV 核心抗原ELISA 试剂，其基本原理是:以基因工程核心抗原免疫小鼠后所获得的纯化抗HCV 核心抗原单克隆抗体作为固相包被物，用与固相包被物有不同抗原决定簇的抗-HCV 核心抗原单克隆抗体作为辣根过氧化物酶标记物，与血清中总的或游离的HCV 核心抗原反应，OPD 显色后进行定性或定量测定. 该法不受被测样品中抗-HCV 的干扰，检测结果准确可靠，与RT-PCR 方法相比具有方法简单、时间短、对环境要求低以及假阳性率低的特点，在临床上可用于HCV 血清学转换前的早期急性丙型肝炎诊断、抗-HCV 阳性感染者的病毒血症分析以及HCV 感染者治疗前后病毒血症追踪分析等[29-30].2003-03在法国巴黎召开的关于HCV 核心抗原检测技术的第一届专题会议认为:该试剂对HCV 核心抗原的检出比抗-HCV 的检出约早49 d，可用于供血员的筛查，这将显著提高输血的安全性. 但是由于方法敏感性的限制，HCV RNA水平低于20 000 kIU/L时不宜采用检测HCV 核心抗原的方法.Ortho 公司的该试剂已于2004-04在欧洲上市，目前主要处于临床对比实验和评价阶段，还没有通过美国食品和药物管理局(FDA)的批准.
HCV核心抗原是HCV 结构区抗原的一部分，这可能是检出率低的原因之一，若能对非结构区抗原进行联合检测，可能将提高检出率. 血清中可存在游离的非结构蛋白NS3，其保守性相对较高[31]，可用于血清学诊断. 国内已有关于献血者血清中HCV NS3和核心蛋白抗原检测的报道[32].
总之，丙型肝炎病毒抗原、抗体和RNA 的联合检测已成为HCV 感染诊断的主要指标，扩大了检测范围，缩短了窗口期，有利于早期诊断，同时对这些指标的出现与消退规律、及其与临床病理演变关系的追踪观察分析将对HCV 感染情况、治疗方案的选择和预后判断等提供依据，有更直接的意义. 尽管我国近几年对HCV 实验室诊断方法的研究获得了突破和发展，但目前常用的国产试剂仍有一定的漏检率，因此只有提高国产抗-HCV 试剂的敏感性和特异性，规范HCV RNA的检测，才能提高实验室检测结果的可信度; 同时作为HCV 抗体检验的补充试验，应发展HCV 抗原的检测方法，提高对窗口期感染者的检出率[33]. 所以研制特异性好、灵敏度高、价格合理的HCV 诊断试剂，尤其是HCV 抗原检测试剂仍是当前我国HCV 研究的重要课题之一
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谢立, 吴晓东. 丙型肝炎病毒检测方法的研究进展及其临床意义. 世界华人消化杂志 2005;13(7):884-886 0 引言 丙型肝炎病毒是单股正链RNA 病毒.1991年，国际病毒命名委员会(ICTV)将其归为黄病毒科丙型肝炎病毒属[1]，其基因组含有一个大约9033个核苷酸构成的大开放读码框(ORF)，可编码3010-3033个氨基酸的多蛋白前体，多蛋白N 端的1/4依次为核心蛋白(C)和包膜蛋白(E1和E2) 等结构蛋白，其余依次为NS2、NS3、NS4和NS5等非结构蛋白[2]，膜蛋白分布于病毒表面，NS3蛋白具有蛋白酶的功能，NS5蛋白为一依赖于RNA 的RNA 多聚酶. 与其他RNA 病毒一样，HCV 基因组有很大的变异性，可能会引起其分子生物学行为、感染性、临床致病性及对药物治疗的反应等诸方面的不同[3-4]. 现已证实，90%非肠道传播的非甲非乙型肝炎(NANBH)为HCV 感染所致[1]，35-50%的非甲非乙型肝炎发展为慢性肝炎，与肝癌的发生相关[2]. 自从1978年Shirachi et al首先报道用双向免疫扩散法在输血后肝炎患者急性期和恢复期血清中找到了丙型肝炎病毒特异性的抗原和抗体，而后不少学者利用放射免疫(RIA)和酶联免疫(ELISA)等方法都曾找到了特异性的丙型肝
炎病毒抗原和抗体[5-6].1989年，Choo et al从大量有高度传染性的黑猩猩血浆中提取核酸，经逆转录和分子克隆并进行筛选，获得了部分HCVcDNA 序列，并表达重组抗原，建立了特异性抗-HCV 血清学的检测方法[7-8]，使丙型肝炎的研究成为近年来非常活跃的研究领域，并取得了重大进展. 我们就HCV 血清学检测方法的研究进展进行了综述.
1 丙型肝炎病毒抗-HCV 的检测
随着血液制品在世界范围的流通，HCV 感染呈世界性分布，为了控制丙型肝炎病毒的血液传播，世界各国均开展了对献血员抗-HCV 的检测. 常用的抗-HCV 诊断试剂采用间接酶联免疫法(ELISA)，其基本原理是以HCV 抗原包被酶标板，用辣根过氧化物酶标记的抗人IgG 与被检血清中的抗-HCV 反应，邻苯二胺(OPD)或3，3’5，5’-四甲基联苯胺(TMB)显色后，根据颜色的深浅进行阴阳性判断. 该方法中包被抗原的组成和质量是关键因素. 第一代抗-HCV ELISA采用的抗原C 100-3是HCV 非结构基因(NS3/NS4)和人超氧化物歧化酶基因嵌合后表达的融合蛋白，灵敏度低，漏检率较高; 第二代抗-HCV ELISA在第一代基础上增加了核心区重组蛋白C 22和NS3区重组蛋白C 33c ，虽然在灵敏度和特异性上有很大改善，但仍不能排除由于重组融合蛋白带来的少数假阳性和极少数的漏检[9]. 目前我国多采用第三代抗-HCV ELISA试剂，其包被抗原为HCV 核心抗原、NS3、NS4和NS5抗原，特异性超过99%，虽然目前缺乏判断其敏感性的金标准，但对于免疫功能正常的HCV RNA阳性感染者，抗-HCV 检出率也高于99%[10].
2 丙型肝炎病毒核酸RNA 的检测
HCV感染后一般到抗体转阳有一个较长的窗口期，平均为70 d，有的患者窗口期可延长至6-9 mo或更长，约1-3%的患者抗-HCV 可持续阴性，而基因组的复制出现得很早，感染后数天即出现病毒血症. 已有输血后即有丙型肝炎病毒感染发生的报道，这表明抗-HCV 阴性的献血员中有少数存在丙型肝炎病毒输血传播的可能性[11]; 另外，美国已报道了1例抗-HCV 阴性的器官捐赠者对接受移植者造成丙型肝炎病毒急性感染[12];Willemset al[13]检测克罗地亚不同地区输血中心的2718份抗-HCV 阴性血浆中2.1%为HCV RNA阳性. 因此直接检测HCV RNA对于筛查窗口期HCV 感染的献血者，降低输血后HCV 感染的发病率是必要的. 外周血中检出HCV RNA是HCV 复制活跃的可靠指标，在感染1-2 wk内血清中可检测到HCV RNA，在感染自然恢复前血清中HCV RNA将达到一个高峰，但HCV RAN在达到峰值或重新出现前数天或数周内偶尔也可能检测不到. 在大多数向慢性转化的感染者中，HCV
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HCV RNA检测包括定性和定量两种方法，其基本原理就是逆转录聚合酶链反应(RT-PCR):首先经逆转录酶作用，在特异性引物存在下，将HCV RNA逆转录为单链的cDNA ，再通过PCR 将cDNA 扩增. 定性PCR 的灵敏度高于定量PCR ，例如罗氏公司试剂，定性PCR 的灵敏度为50 kIU/L，定量PCR 为600 kIU/L;拜尔公司的定性PCR(转率介导扩增法，TMA) 试剂的灵敏度为10 kIU/L，其定量PCR 为615 kIU/L，因此定性PCR 主要用于急慢性丙型肝炎诊断，而定量PCR 则用于疗效监测[15]. 不同定量分析方法中的检测单位与临床标本的HCV RNA 实际水平的关系不完全一致，世界卫生组织制定了HCV RNA定量分析单位的国际标准(IU)，目前分析方法检测的下限值范围为30-615 kIU/L，上限值范围为5×105-7.7×105 kIU/L，特异性为98-99%，且不受基因型的影响[10].
尽管RT-PCR 检测HCV RNA具有早期、敏感和特异等特点，但该方法在技术和设备上要求较高，且费时，检出率较低，主要原因是:HCV在血液和肝组织中的感染滴度很低，且有一定波动;HCV RNA易被血细胞中的RNA 酶降解，因此如果被检标本保存不当(例如反复冻融) 将影响检测结果;HCV RNA还受进食的影响，易与血中脂质及脂蛋白结合，降低检出率; 另外，RT-PCR 的多步骤实验中任何步骤的问题均易影响其检出. 该方法也容易因污染而出现假阳性. 因此RT-PCR 方法难以在常规工作或基层实验室推广，限制了普遍应用[16]. 为了使HCV RNA的检测规范化，应采取以下相应措施:对患者在空腹条件下抽血，及早分离血清和进行检测，避免对标本反复冻融，PCR 的整个过程应避免RNA 酶及DNA 酶对标本的降解和对模板的污染[17].
3 一种新的HCV 检测方法:血清中HCV 核心抗原的检测丙肝病毒核心蛋白约含190 aa，其氨基酸序列十分保守，比较已有的HCV 各分离株的氨基酸序列，其同源性超过95%，在病毒增殖及发病机制中起重要作用，是HCV 感染的重要标志.
自从1989年建立了丙肝病毒抗-HCV 检测方法以来，一些学者也曾经试图建立血清中HCV 抗原的检测方法，但由于血液中HCV 抗原含量太低，用常规方法无法检出. 近年来由于HCV 单克隆抗体的研制成功，已有国内外学者发表了肝组织及分泌物中HCV 抗原检测成功的报道. 例如:国外已有学者报道应用HCV 基因组C 区、E 区和NS3区表达抗原制备单克隆抗体检测肝组织中HCV 相关抗原获得成功[18];Pasquier et al报道了应用重组HCV 抗原
所获动物抗体测定NANBH 患者精液中HCV 抗原的技术[19]. 国内陈佩兰et al也报道了应用HCV 核心区和NS3区单克隆抗体对患者外周血单个核细胞内HCV 抗原的免疫组化检测[20]. 对于血清中HCV 抗原的检测，1996年Kashiwakuma et al[21]报道了用荧光酶免疫分析法(FEIA)检测血清中的HCV 抗原，该方法对重组核心抗原的检测灵敏度可达20 ng/L，对血清中HCV 核心抗原的检出与HCV RNA呈正相关，在慢性丙肝患者中的检测率为92.3%(70/76);1999年Aoyagi et al[22]建立了一种不需要特殊仪器设备的简单、高灵敏度的酶免分析法用于检测血清中的HCV 核心抗原，在该方法中先用三种去垢剂(TritonX-100，CHAPS 和SDS) 预处理被检标本，即有效灭活标本中的抗核心抗原抗体，检测结果不受血清样品中的抗凝剂或血液因子的影响，125名健康人群和50例乙肝患者的HCV 核心抗原检测均为阴性，而73例抗-HCV 阳性患者中HCV 核心抗原检出率为78.1%(57/73)，与HCV RNA也有很好的相关性(r= 0.8，P
血清中HCV 抗原的检测还有利于HCV 感染患者的早期发现，特别是某些免疫功能紊乱、免疫功能低下的患者和某些不产生抗体的携带者[25].Courouce [26]和Lee et al[27]对血清转换前的患者进行了血清中HCV 抗原的检测，结果表明HCV 抗原的检出比HCV RNA平均晚1-2 d ，而且与HCV RNA的动力学变化密切相关，可以作为HCV 复制的标志[28].
目前美国Ortho 公司已推出了用双抗体夹心法定性或定量检测血清样品中总的或游离的HCV 核心抗原ELISA 试剂，其基本原理是:以基因工程核心抗原免疫小鼠后所获得的纯化抗HCV 核心抗原单克隆抗体作为固相包被物，用与固相包被物有不同抗原决定簇的抗-HCV 核心抗原单克隆抗体作为辣根过氧化物酶标记物，与血清中总的或游离的HCV 核心抗原反应，OPD 显色后进行定性或定量测定. 该法不受被测样品中抗-HCV 的干扰，检测结果准确可靠，与RT-PCR 方法相比具有方法简单、时间短、对环境要求低以及假阳性率低的特点，在临床上可用于HCV 血清学转换前的早期急性丙型肝炎诊断、抗-HCV 阳性感染者的病毒血症分析以及HCV 感染者治疗前后病毒血症追踪分析等[29-30].2003-03在法国巴黎召开的关于HCV 核心抗原检测技术的第一届专题会议认为:该试剂对HCV 核心抗原的检出比抗-HCV 的检出约早49 d，可用于供血员的筛查，这将显著提高输血的安全性. 但是由于方法敏感性的限制，HCV RNA水平低于20 000 kIU/L时不宜采用检测HCV 核心抗原的方法.Ortho 公司的该试剂已于2004-04在欧洲上市，目前主要处于临床对比实验和评价阶段，还没有通过美国食品和药物管理局(FDA)的批准.
HCV核心抗原是HCV 结构区抗原的一部分，这可能是检出率低的原因之一，若能对非结构区抗原进行联合检测，可能将提高检出率. 血清中可存在游离的非结构蛋白NS3，其保守性相对较高[31]，可用于血清学诊断. 国内已有关于献血者血清中HCV NS3和核心蛋白抗原检测的报道[32].
总之，丙型肝炎病毒抗原、抗体和RNA 的联合检测已成为HCV 感染诊断的主要指标，扩大了检测范围，缩短了窗口期，有利于早期诊断，同时对这些指标的出现与消退规律、及其与临床病理演变关系的追踪观察分析将对HCV 感染情况、治疗方案的选择和预后判断等提供依据，有更直接的意义. 尽管我国近几年对HCV 实验室诊断方法的研究获得了突破和发展，但目前常用的国产试剂仍有一定的漏检率，因此只有提高国产抗-HCV 试剂的敏感性和特异性，规范HCV RNA的检测，才能提高实验室检测结果的可信度; 同时作为HCV 抗体检验的补充试验，应发展HCV 抗原的检测方法，提高对窗口期感染者的检出率[33]. 所以研制特异性好、灵敏度高、价格合理的HCV 诊断试剂，尤其是HCV 抗原检测试剂仍是当前我国HCV 研究的重要课题之一
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