一. 重组质粒的构建 T 质粒载体
重组的DNA 分子是在DNA 连接酶的作用下,有Mg2 、ATP 存在的连接缓冲系统中,将分别经酶切的载体分子与外源DNA 分子进行连接。
DNA 连接酶有两种:T4噬菌体DNA 连接酶和大肠杆菌DNA 连接酶。两种DNA 连接酶都有将两个带有相同粘性末端的DNA 分子连在一起的功能,而且T4噬菌体DNA 连接酶还有一种大肠杆菌DNA 连接酶没有的特性,即能使两个平末端的双链DNA 分子连接起来。但这种连接的效率比粘性末端的连接率低,一般可通过提高T4噬菌体DNA 连接酶浓度或增加DNA 浓度来提高平末端的连接效率。 T4噬菌体DNA 连接酶催化DNA 连接反应分为3 步:首先,T4 DNA 连接酶与辅因子ATP 形成酶-ATP 复合物;然后,酶-ATP 复合物再结合到具有5’磷酸基和3’羟基切口的DNA 上,使DNA 腺苷化;最后产生一个新的磷酸二酯键,把切口封起来。连接反应通常将两个不同大小的片断相连。
很多DNA 聚合酶在进行PCR 扩增时会在PCR 产物双链DNA 每条链的3’端加上一个突出的碱基A 。pUCm-T 载体是一种已经线性化的载体,载体每条链的3’端带有一个突出的T 。这样,pUCm-T 载体的两端就可以和PCR 产物的两端进行正确的AT 配对,在连接酶的催化下,就可以把PCR 产物连接到pUCm-T 载体中,形成含有目的片断的重组载体。
连接反应的温度在37℃时有利于连接酶的活性。但是在这个温度下粘末端的氢键结合是不稳定的。因此采取折中的温度,即12-16℃,连接12-16h (过夜),这样既可最大限度地发挥连接酶的活性,又兼顾到短暂配对结构的稳定。
二. 感受态制备原理
细菌在0°C CaCl2低渗溶液中胀成球形,丢失部分膜蛋白,成为容易
吸收外源DNA 的感受态。
三. β-半乳糖甘酶显色反应选择法
LacZ 基因是大肠杆菌乳糖操纵子中的一个基因,可以编码β—半乳糖核苷酶。β—半乳糖核苷酶是由4个亚基组成的四聚体,可催化乳糖的水解.用X-Gal 为底物进行染色时,呈蓝色。
现在一些特定的质粒(比如pUC/pBS等),常带有β—半乳糖核苷酶的调控序列和β—半乳糖核苷酶N 端146个氨基酸(α肽段)的编码序列,在这个编码序列里还插入一个多克隆位点(MCS ), 它并不影响lacZ 的表达。另外,常用的大肠杆菌带有β—半乳糖核苷酶C 端部分序列(β肽段),的编码序列。在各自独立的情况下,这些质粒与大肠杆菌各自编码的β—半乳糖核苷酶片段都没有酶的活性。只有当携带α肽编码信息的克隆载体成功进入宿主细胞,在培养基诱导物IPTG 的诱导下,载体质粒能够合成β—半乳糖核苷酶N 端(α肽段),这样就与宿主细胞合成的β—半乳糖核苷酶C 端部分序列(β肽段)互补,形成完整的β—半乳糖核苷酶活性蛋白。
Amp (100mg/ml):溶解0.1g 氨苄青霉素钠盐于足量的水中,最后定容至1ml ,用0.22μm 滤膜过滤除菌.
实验过程 (一). 目的基因片段与载体连接
器材
旋涡混合器,微量移液取样器,移液器吸头,1.5ml 微量离心管,双面离心管架,台式离心机,干式恒温气浴。
试剂
T 载体,T4 DNA 连接酶,连接酶缓冲液,无菌dd Water 。 操作步骤
PCR 产物与T 载体直接连接:
(1) 事先将干式恒温仪(或冰盒里的水)温度设定在14~16°C 。
(2) 取4个灭菌的200ul 微量离心管,加入:(需要调整) 4ml 目的基因 ;1ml T载体 ;0.5ml T4 DNA连接酶(TAKARA, 350U/ul);1ml 连接酶缓冲液10 x buffer ;3.5 ml dd Water ,总量10ml 体系。
(3) 述混合液轻轻震荡后再短暂离心,然后置于14°C 干式恒温仪(或14°C 水中)中保温过夜(12-16h )。
(4) 连接后的产物可以立即用来转化感受态细胞或置4°C 冰箱备用。
(二). 大肠杆菌感受态细胞的制备细菌转化
仪器:旋涡混合器,微量移液取样器,移液器吸头,50ml 微量离心管,
1.5ml 微量离心管,台式冷冻离心机,制冰机,恒温摇床,分光光度计,超净工作台,恒温培养箱,摇菌试管,三角烧瓶,接种环,恒温摇床,培养皿(已铺好固体LB-Amp ),酒精灯,玻璃涂棒,恒温培养箱,滤膜和过滤器
试剂: E. coli 菌种,LB 培养基,0.1 mol/L CaCl2溶液,无菌dd Water ,LB 培养基(不加抗菌素),LB 培养基(加抗菌素),无菌dd water ,IPTG ,X-gal 。
步骤(1) 在超净工作台中,将1ml 大肠杆菌菌液加入100ml LB液态培养基(不含抗菌素),37℃摇床培养过夜。
(2) 取0.5ml 上述菌液转接到含有50mL LB培养基的三角烧瓶中,37℃下
250r/min摇床培养2~3h,测定OD590为0.35~0.4左右(
(3) 将1ml 菌液加入到4支1.5mL 预冷无菌的聚丙烯离心管中,于冰上放置10min ,然后于4℃,5000rpm 离心5min 。
(4) 将离心管倒置以倒尽上清液,加入1ml 冰冷的0.1 mol/L CaCl2溶液,立即在涡旋混合器上混匀,插入冰中放置30min 。
(5) 4℃,5000rpm 离心5min ,弃上清液后,用100μL 冰冷的0.1 mol/L CaCl2溶液垂悬,插入冰中放置2h ,可以直接用作转化实验,或立即放入-4摄氏度冰柜中保藏。
(6) 事先将恒温水浴的温度调到42℃。
(7) 从-70℃ 超低温冰柜中取出一管(100μL )感受态菌,立即用手指加温融化后插入冰上,冰浴5~10min。
(8) 加入5μL 连接好的质粒混合液(DNA 含量不超过100ng ),轻轻震荡后放置冰上20min 。
(9) 轻轻摇匀后插入42℃水浴中90s 进行热休克,然后迅速放回冰中,静置3min 。
(10) 在超净工作台中向上述各管中分别加入300μL LB 培养基(不含抗菌素)轻轻混匀,然后固定到摇床的弹簧架上37℃震荡1h 。
(11) 在超净工作台中取上述转化混合液200μL ,分别滴到含合适抗菌素(Amp 100ug/L)的固体LB 平板培养皿中,再在平板上滴加40μL 20mg/ml X-gal,7μL 200mg/ml IPTG,用酒精灯烧过的玻璃涂布棒涂布均匀(注意:一个不含抗生素作为对照组,玻璃涂布棒上的酒精熄灭后稍等片刻,待其冷却后再涂,菌液涂皿操作时,应避免反复来回涂布,因为感受态细菌的细胞壁有了变化,过多的机械挤压涂布会使细胞破裂,影响转化率。)。
(12) 在涂好的培养皿上做上标记,先放置在37℃恒温培养箱中30min 直到表面的液体都渗透到培养基里后,再倒置过来放入37℃恒温培养箱过夜。
(13) 在被细菌污染的桌面上喷洒70%乙醇,擦干桌面。
(14) 观察平板上长出的菌落克隆,以菌落之间能互相分开为好。注意白色菌斑。
(三). 转化克隆的筛选和鉴定
器材 旋涡混合器,小镊子,微量移液取样器,移液器吸头,1.5ml 微量离心管,双面离心管架,干式恒温气浴(或恒温水浴锅),制冰机,恒温摇床,超净工作台,酒精灯,无菌牙签,摇菌管。
试剂LB 培养基(加抗菌素),PCR 用试剂,引物,质粒提取用试剂,酶切需要的限制性内且酶及其缓冲液,65%甘油(65%甘油,0.1mol/L MgSO4,0.025mol/L Tris Cl pH8.0)。
操作步骤 方法一:快速PCR 筛选法
(1) 在转化的平板培养基上随机选取4个边缘清晰的白色菌落,并用记号笔在其所在的培养皿底部玻璃背面画圈做标记编号。
(2)在0.2ml PCR 微量离心管中配制25μl 反应体系。
dd water 16μl
10×PCR buffer(不含MgCl2)2.5μl
25mM MgCl2 1.5μl
2.5mmol/L dNTP 2μl (每种dNTP 终浓度0.2mM )
10μmol/L Primer1 1μl (12.5—25pmoles )
10μmol/L primer2 1μl (12.5—25pmoles )
模板质粒 用小tip 头轻轻粘一下选中的白色菌落,再伸入PCR 混合液中洗一洗 Taq 酶 0.5μl (1.5u )
总体积 25μl
(2)根据厂商的操作手册设置PCR 仪的循环程序(本实验室已经设置为WZ ): ① 94℃5min ②94℃1min ③60℃1min ④72℃1min50s ⑤goto ②29 times ⑥72℃10min
(2) PCR结束后,取10μl 产物进行琼脂糖凝胶电泳(与原始插入片断同时比对)。观察胶上是否有预计的主要产物带。
(3) 按照编号找到培养皿中的原菌斑。根据需要进行放大培养提取其质粒
(4) 提取到的质粒与原先的空载体(或已知分子量的质粒)再对比电泳,以进一步确认。
方法二:提质粒再PCR 或酶切鉴定
(1)在超净工作台中取3支无菌摇菌管,各加入3mL LB(含50mg/mL氨苄青霉素),用记号笔写好编号。
(2)在超净工作台中将70%乙醇浸泡的小镊子头用酒精灯烤过,镊取一支无菌牙签。用牙签的尖部接触转化的平板培养基 上的一个白色菌落,然后将牙签放入盛有3mL LB (含50mg/mL氨苄青霉素)的摇菌管中。用此法随机取3个白色菌落,分别装入3个摇菌管中。
(3)37℃摇菌过夜后,用碱裂解法分别提取质粒。摇菌管中的剩余菌液保留在4℃冰箱中。
(4)提取到的3管质粒样品可用PCR 法扩增,或用酶切电泳法来鉴定其上是否含有外源插入片断(方法见有关实验)。
(5)将经过鉴定判断为正确的质粒保存。按照编号找到冰箱中原菌液。根据需要进行放大培养提取其质粒或进行诱导表达,或取500mL 菌液与500mL 65%甘油混合后-80℃保存。
(6)在被细菌污染的桌面上喷洒70%乙醇,擦干桌面
一. 重组质粒的构建 T 质粒载体
重组的DNA 分子是在DNA 连接酶的作用下,有Mg2 、ATP 存在的连接缓冲系统中,将分别经酶切的载体分子与外源DNA 分子进行连接。
DNA 连接酶有两种:T4噬菌体DNA 连接酶和大肠杆菌DNA 连接酶。两种DNA 连接酶都有将两个带有相同粘性末端的DNA 分子连在一起的功能,而且T4噬菌体DNA 连接酶还有一种大肠杆菌DNA 连接酶没有的特性,即能使两个平末端的双链DNA 分子连接起来。但这种连接的效率比粘性末端的连接率低,一般可通过提高T4噬菌体DNA 连接酶浓度或增加DNA 浓度来提高平末端的连接效率。 T4噬菌体DNA 连接酶催化DNA 连接反应分为3 步:首先,T4 DNA 连接酶与辅因子ATP 形成酶-ATP 复合物;然后,酶-ATP 复合物再结合到具有5’磷酸基和3’羟基切口的DNA 上,使DNA 腺苷化;最后产生一个新的磷酸二酯键,把切口封起来。连接反应通常将两个不同大小的片断相连。
很多DNA 聚合酶在进行PCR 扩增时会在PCR 产物双链DNA 每条链的3’端加上一个突出的碱基A 。pUCm-T 载体是一种已经线性化的载体,载体每条链的3’端带有一个突出的T 。这样,pUCm-T 载体的两端就可以和PCR 产物的两端进行正确的AT 配对,在连接酶的催化下,就可以把PCR 产物连接到pUCm-T 载体中,形成含有目的片断的重组载体。
连接反应的温度在37℃时有利于连接酶的活性。但是在这个温度下粘末端的氢键结合是不稳定的。因此采取折中的温度,即12-16℃,连接12-16h (过夜),这样既可最大限度地发挥连接酶的活性,又兼顾到短暂配对结构的稳定。
二. 感受态制备原理
细菌在0°C CaCl2低渗溶液中胀成球形,丢失部分膜蛋白,成为容易
吸收外源DNA 的感受态。
三. β-半乳糖甘酶显色反应选择法
LacZ 基因是大肠杆菌乳糖操纵子中的一个基因,可以编码β—半乳糖核苷酶。β—半乳糖核苷酶是由4个亚基组成的四聚体,可催化乳糖的水解.用X-Gal 为底物进行染色时,呈蓝色。
现在一些特定的质粒(比如pUC/pBS等),常带有β—半乳糖核苷酶的调控序列和β—半乳糖核苷酶N 端146个氨基酸(α肽段)的编码序列,在这个编码序列里还插入一个多克隆位点(MCS ), 它并不影响lacZ 的表达。另外,常用的大肠杆菌带有β—半乳糖核苷酶C 端部分序列(β肽段),的编码序列。在各自独立的情况下,这些质粒与大肠杆菌各自编码的β—半乳糖核苷酶片段都没有酶的活性。只有当携带α肽编码信息的克隆载体成功进入宿主细胞,在培养基诱导物IPTG 的诱导下,载体质粒能够合成β—半乳糖核苷酶N 端(α肽段),这样就与宿主细胞合成的β—半乳糖核苷酶C 端部分序列(β肽段)互补,形成完整的β—半乳糖核苷酶活性蛋白。
Amp (100mg/ml):溶解0.1g 氨苄青霉素钠盐于足量的水中,最后定容至1ml ,用0.22μm 滤膜过滤除菌.
实验过程 (一). 目的基因片段与载体连接
器材
旋涡混合器,微量移液取样器,移液器吸头,1.5ml 微量离心管,双面离心管架,台式离心机,干式恒温气浴。
试剂
T 载体,T4 DNA 连接酶,连接酶缓冲液,无菌dd Water 。 操作步骤
PCR 产物与T 载体直接连接:
(1) 事先将干式恒温仪(或冰盒里的水)温度设定在14~16°C 。
(2) 取4个灭菌的200ul 微量离心管,加入:(需要调整) 4ml 目的基因 ;1ml T载体 ;0.5ml T4 DNA连接酶(TAKARA, 350U/ul);1ml 连接酶缓冲液10 x buffer ;3.5 ml dd Water ,总量10ml 体系。
(3) 述混合液轻轻震荡后再短暂离心,然后置于14°C 干式恒温仪(或14°C 水中)中保温过夜(12-16h )。
(4) 连接后的产物可以立即用来转化感受态细胞或置4°C 冰箱备用。
(二). 大肠杆菌感受态细胞的制备细菌转化
仪器:旋涡混合器,微量移液取样器,移液器吸头,50ml 微量离心管,
1.5ml 微量离心管,台式冷冻离心机,制冰机,恒温摇床,分光光度计,超净工作台,恒温培养箱,摇菌试管,三角烧瓶,接种环,恒温摇床,培养皿(已铺好固体LB-Amp ),酒精灯,玻璃涂棒,恒温培养箱,滤膜和过滤器
试剂: E. coli 菌种,LB 培养基,0.1 mol/L CaCl2溶液,无菌dd Water ,LB 培养基(不加抗菌素),LB 培养基(加抗菌素),无菌dd water ,IPTG ,X-gal 。
步骤(1) 在超净工作台中,将1ml 大肠杆菌菌液加入100ml LB液态培养基(不含抗菌素),37℃摇床培养过夜。
(2) 取0.5ml 上述菌液转接到含有50mL LB培养基的三角烧瓶中,37℃下
250r/min摇床培养2~3h,测定OD590为0.35~0.4左右(
(3) 将1ml 菌液加入到4支1.5mL 预冷无菌的聚丙烯离心管中,于冰上放置10min ,然后于4℃,5000rpm 离心5min 。
(4) 将离心管倒置以倒尽上清液,加入1ml 冰冷的0.1 mol/L CaCl2溶液,立即在涡旋混合器上混匀,插入冰中放置30min 。
(5) 4℃,5000rpm 离心5min ,弃上清液后,用100μL 冰冷的0.1 mol/L CaCl2溶液垂悬,插入冰中放置2h ,可以直接用作转化实验,或立即放入-4摄氏度冰柜中保藏。
(6) 事先将恒温水浴的温度调到42℃。
(7) 从-70℃ 超低温冰柜中取出一管(100μL )感受态菌,立即用手指加温融化后插入冰上,冰浴5~10min。
(8) 加入5μL 连接好的质粒混合液(DNA 含量不超过100ng ),轻轻震荡后放置冰上20min 。
(9) 轻轻摇匀后插入42℃水浴中90s 进行热休克,然后迅速放回冰中,静置3min 。
(10) 在超净工作台中向上述各管中分别加入300μL LB 培养基(不含抗菌素)轻轻混匀,然后固定到摇床的弹簧架上37℃震荡1h 。
(11) 在超净工作台中取上述转化混合液200μL ,分别滴到含合适抗菌素(Amp 100ug/L)的固体LB 平板培养皿中,再在平板上滴加40μL 20mg/ml X-gal,7μL 200mg/ml IPTG,用酒精灯烧过的玻璃涂布棒涂布均匀(注意:一个不含抗生素作为对照组,玻璃涂布棒上的酒精熄灭后稍等片刻,待其冷却后再涂,菌液涂皿操作时,应避免反复来回涂布,因为感受态细菌的细胞壁有了变化,过多的机械挤压涂布会使细胞破裂,影响转化率。)。
(12) 在涂好的培养皿上做上标记,先放置在37℃恒温培养箱中30min 直到表面的液体都渗透到培养基里后,再倒置过来放入37℃恒温培养箱过夜。
(13) 在被细菌污染的桌面上喷洒70%乙醇,擦干桌面。
(14) 观察平板上长出的菌落克隆,以菌落之间能互相分开为好。注意白色菌斑。
(三). 转化克隆的筛选和鉴定
器材 旋涡混合器,小镊子,微量移液取样器,移液器吸头,1.5ml 微量离心管,双面离心管架,干式恒温气浴(或恒温水浴锅),制冰机,恒温摇床,超净工作台,酒精灯,无菌牙签,摇菌管。
试剂LB 培养基(加抗菌素),PCR 用试剂,引物,质粒提取用试剂,酶切需要的限制性内且酶及其缓冲液,65%甘油(65%甘油,0.1mol/L MgSO4,0.025mol/L Tris Cl pH8.0)。
操作步骤 方法一:快速PCR 筛选法
(1) 在转化的平板培养基上随机选取4个边缘清晰的白色菌落,并用记号笔在其所在的培养皿底部玻璃背面画圈做标记编号。
(2)在0.2ml PCR 微量离心管中配制25μl 反应体系。
dd water 16μl
10×PCR buffer(不含MgCl2)2.5μl
25mM MgCl2 1.5μl
2.5mmol/L dNTP 2μl (每种dNTP 终浓度0.2mM )
10μmol/L Primer1 1μl (12.5—25pmoles )
10μmol/L primer2 1μl (12.5—25pmoles )
模板质粒 用小tip 头轻轻粘一下选中的白色菌落,再伸入PCR 混合液中洗一洗 Taq 酶 0.5μl (1.5u )
总体积 25μl
(2)根据厂商的操作手册设置PCR 仪的循环程序(本实验室已经设置为WZ ): ① 94℃5min ②94℃1min ③60℃1min ④72℃1min50s ⑤goto ②29 times ⑥72℃10min
(2) PCR结束后,取10μl 产物进行琼脂糖凝胶电泳(与原始插入片断同时比对)。观察胶上是否有预计的主要产物带。
(3) 按照编号找到培养皿中的原菌斑。根据需要进行放大培养提取其质粒
(4) 提取到的质粒与原先的空载体(或已知分子量的质粒)再对比电泳,以进一步确认。
方法二:提质粒再PCR 或酶切鉴定
(1)在超净工作台中取3支无菌摇菌管,各加入3mL LB(含50mg/mL氨苄青霉素),用记号笔写好编号。
(2)在超净工作台中将70%乙醇浸泡的小镊子头用酒精灯烤过,镊取一支无菌牙签。用牙签的尖部接触转化的平板培养基 上的一个白色菌落,然后将牙签放入盛有3mL LB (含50mg/mL氨苄青霉素)的摇菌管中。用此法随机取3个白色菌落,分别装入3个摇菌管中。
(3)37℃摇菌过夜后,用碱裂解法分别提取质粒。摇菌管中的剩余菌液保留在4℃冰箱中。
(4)提取到的3管质粒样品可用PCR 法扩增,或用酶切电泳法来鉴定其上是否含有外源插入片断(方法见有关实验)。
(5)将经过鉴定判断为正确的质粒保存。按照编号找到冰箱中原菌液。根据需要进行放大培养提取其质粒或进行诱导表达,或取500mL 菌液与500mL 65%甘油混合后-80℃保存。
(6)在被细菌污染的桌面上喷洒70%乙醇,擦干桌面